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菌丝如何照像

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发表于 2005-5-23 10:03:30 |显示全部楼层
请问一下,菌丝照像是否一定要染色?最好的实用的染色剂是什么?是否一定要压片?书中菌丝照像是在光学显微镜下还是电子显微镜下照的?多大倍数下照像效果较好?挑取是不是一定不带培养基,我看到有材料说碘酒可以染色,可是我试用过效果不好,视野不太清楚,锁状联合典型特征显现不出来。

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发表于 2006-2-23 22:16:55 |显示全部楼层
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论坛元老

发表于 2006-4-24 11:35:57 |显示全部楼层
一定要染色,最好的实用的染色剂是美兰,不一定要压片,光学显微镜,挑取一定不带培养基,
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发表于 2006-6-2 14:42:45 |显示全部楼层
一般新鲜菌丝用刚果红染效果很好, 一般在光学显微镜下40或100倍镜头下就可以观察到锁状联合, 挑取时带不带培养基无所谓, 只需肉眼能见的一小点足亦, 放至载玻片上, 滴上一滴清水, 压盖玻片, 即可观察. 效果不明显时, 再染色, 从盖玻片一侧点一滴染色剂, 从另外一侧用吸水纸吸取水分, 染色剂就可以迅速扩散至整个视野.
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论坛元老

发表于 2006-7-21 21:29:35 |显示全部楼层

也可用PAS染色法进行研究:

操作步骤 1. 固定液:用Carnoy液或75%酒精  Carnoy固定液: 纯酒精 60 ml  冰醋酸 10ml 氯仿 30ml 2. 染色液 1) 过碘酸酒清夜配法: 过碘酸(HIO .2H O) 0.4g  95% 酒精 35ml  M/5醋酸钠(2.72g+蒸馏水100ml) 5ml蒸馏水10ml 保存于冰箱内,用棕色瓶,可用两周. 2) Schiff氏液: 0.5克碱性品红加入100毫升蒸馏水中,时时摇动三角瓶5分钟,使之充分溶解.冷却至50℃后过滤,加入10毫升1N盐酸.冷却至25℃,加入0.5-1克偏重硫酸钠,在室温中至少静置24小时,然后密封冰箱保存. 3) Schiff氏酒精液配置  Schiff氏液 11.5ml  1N HCI 0.5ml  纯酒精 23ml 4) 亚硫酸水 1%偏重亚硫酸钠 10ml   1N HCI 10ml   蒸馏水 180ml的树胶溶解。

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论坛元老

发表于 2006-11-8 14:37:23 |显示全部楼层

真的很专业

受益

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论坛元老

发表于 2008-7-15 18:10:34 |显示全部楼层
[em17]
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发表于 2008-8-13 23:11:36 |显示全部楼层
受益啊,谢了
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