chenshuai 发表于 2011-4-16 08:05:27

[原创]柞蚕蛹虫草栽培技术试验研究

 
<p align="center"><b>柞蚕蛹虫草栽培试验研究</b></p>
<p align="center">陈帅&nbsp; </p>
<p align="center">(辽东学院 &nbsp;辽宁丹东 118003)</p>
<p><b>摘要:</b>柞蚕蛹草栽培试验研究表明:将蛹虫草菌液直接注射柞蚕蛹体内有利于菌丝发育,减少污染,蛹体僵化快;在进行菌丝培养时以“营养土”覆盖蛹体可加速菌丝生长,蛹体发菌均匀一致,蛹体僵化快;蛹体僵化后,用刀在蛹体的一端进行刻伤,蛹虫草出草快,出草一致,缩短生长周期,出草率高,草的质量好。</p>
<p><b>关键词:</b> 蛹虫草&nbsp; 栽培试验研究</p>
<p align="left">蛹虫草(<i>Cordceps milharisc(L)Linr</i>)又称北冬虫夏草,属子囊菌纲,麦角菌科,虫草属。经现代医学研究表明,蛹虫草的主要化学成分与野生冬虫夏草相同,且某些成分含量还要高于冬虫夏草。具有抗疲劳、抑制肿瘤、提高机体免疫力的作用,市场需求与日俱增,具有极大的研究开发空间。</p>
<p>国内蛹草栽培技术现在基本成熟,但在杂菌污染、出草率以及出草质量上还没有达到理想的要求。辽东学院实验中心基础生物实验室在学校的支持下,在专业实验老师的指导下,在大学生创新试验中,不断的进行蛹虫草栽培试验研究,经多次试验验证,将蛹虫草菌液直接注射在柞蚕蛹体内有利于菌丝发育,减少污染,蛹体僵化快;在进行菌丝培养时以“营养土”覆盖蛹体可加速菌丝生长,蛹体发菌均匀一致,利于僵化;蛹体僵化后,用刀在蛹体的一端进行刻伤,蛹虫草出草快,出草一致,缩短生长周期,出草率高,草的质量好。</p>
<p align="left">现将试验结果报告如下:</p>
<p align="left"><b>1 </b><b>试验材料和方法</b></p>
<p align="left"><b>1.1 </b><b>试验材料</b>:蛹虫草液体菌种(由辽宁省丹东金山虫草生产合作社提供);柞蚕蛹(市场购买优质鲜活蚕蛹);经过灭菌的复合“营养土”(草炭、蛭石等)。</p>
<p align="left"><b>1.2 </b><b>试验方法</b></p>
<p align="left">1.2.1 无菌室及蛹体表面消毒:常规消毒处理即可。</p>
<p align="left">1.2.2 试验方法:</p>
<p align="left">试验一:蛹体注菌与蛹体喷菌的对比试验;</p>
<p align="left">
<table cellspacing="0" cellpadding="0" width="100%">
<tbody>
<tr>
<td>
<div v:shape="_x0000_s1029">
<p>图1 覆土发菌培养</p></div></td></tr></tbody></table>试验二:蛹体注菌后覆“营养土”与常规培养的对比试验;</p>
<p align="left">试验三: 蛹体注菌僵蛹刻伤出草与常规出草的对比试验。</p>
<p align="left">试验一操作步骤: 蛹体表面消毒后在超净工作台内注射接种,注射蛹个数100个,接菌后放入培养盒内培养,标示为A<sub>1</sub>;喷菌接种者按照无菌操作规程,将表面消毒好的蛹排放到培养盒内,用无菌喷壶每隔30分钟喷菌一次,连续三次,每次菌液量为100个蛹10毫升左右,接好菌标示为A<sub>2</sub>;将A<sub>1</sub>、A<sub>2</sub>放到培养室培养,观察记录试验结果;</p>
<p align="left">试验二操作步骤:蛹体注菌同试验一,然后将注菌后的培养盒分别标示B<sub>1</sub>、B<sub>2</sub>,其中B<sub>1</sub>是常规试验,B<sub>2</sub>接种后将蛹直接摆放在底部覆有“营养土”的栽培盒内,然后用“营养土”将蛹体覆盖(如图 1), 将B<sub>1</sub>、B<sub>2</sub>放到培养室培养,观察记录试验结果;</p>
<p align="left">试验三操作步骤: 培养方法同方法二,培养好的僵蛹B1各100个分别标示C<sub>1</sub>为常规,C<sub>2</sub>为刻伤(如图 2);培养好的僵蛹B2各100个分别标示C<sub>3</sub>为常规,C<sub>4</sub>为刻伤;将C<sub>1</sub>、C<sub>2</sub>、C<sub>3</sub>、C<sub>4</sub>放到培养室培养,观察记录试验结果。</p>
<p align="left">
<table cellspacing="0" cellpadding="0" width="100%">
<tbody>
<tr>
<td>
<div v:shape="_x0000_s1032">
<p>图2 僵蛹刻伤</p></div></td></tr></tbody></table>1.2.3 菌丝培养 接种后前10天培养室内保持黑暗,温度控制在20℃左右,湿度60%~65%RH。培养10天左右形成僵蛹,培养温度提到20℃~23℃培养出草。</p>
<p align="left">1.2.4 诱导原基形成与子座生长期的管理 培养温度提到20℃~23℃,每天形成5~10℃温差保证4-6小时,白天以自然散射光为主,夜间采用日光灯人为补光,湿度保持在65%RH左右。</p>
<p align="left">原基形成后,培养室内温度需控制在19~23℃之间,湿度提高到90%~95%RH。</p>
<p align="left"><b>2 </b><b>结果与分析</b></p>
<p><b>2.1 </b><b>接种方法对蛹体僵化的影响</b></p>
<p>不同接种方法对蛹体僵化的影响见表1。通过表1可知:接种方法会影响到蛹体僵化。将菌液直接注射到蛹体后,烂头蛹的数量显著降低,每百个仅为3个且僵蛹数与喷菌接种的蛹高出33%,蛹体僵化时间短,质量高。</p>
<p align="center">
<table cellspacing="0" cellpadding="0" width="100%">
<tbody>
<tr>
<td>
<div v:shape="_x0000_s1027">
<p>*注:数据统计开始于接种后5天</p></div></td></tr></tbody></table><b>表1 不同接种方法对蛹体僵化的影响</b></p>
<table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0" width="96%" align="left">
<tbody>
<tr>
<td width="10%">
<p align="center"><b>处理</b></p></td>
<td width="15%">
<p align="center"><b>试验蛹/个</b></p></td>
<td width="15%">
<p align="center"><b>未僵蛹/个</b></p></td>
<td width="13%">
<p align="center"><b>染菌/个</b></p></td>
<td width="15%">
<p align="center"><b>僵蛹数/个</b></p></td>
<td width="17%">
<p align="center"><b>僵蛹时间/天</b></p></td>
<td width="13%">
<p align="center"><b>僵化率/%</b></p></td></tr>
<tr>
<td width="10%">
<p align="center"><b>A<sub>1</sub></b></p>
<p align="center"><b>A<sub>2</sub></b></p></td>
<td width="15%">
<p align="center">100</p>
<p align="center">100</p></td>
<td width="15%">
<p align="center">7</p>
<p align="center">37</p></td>
<td width="13%">
<p align="center">3</p>
<p align="center">8</p></td>
<td width="15%">
<p align="center">90</p>
<p align="center">63</p></td>
<td width="17%">
<p align="center">7</p>
<p align="center">18</p></td>
<td width="13%">
<p align="center">90</p>
<p align="center">63</p></td></tr></tbody></table>
<p><b>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp; 2&nbsp; &nbsp; .2 </b><b>不同发菌培养方式对蛹体僵化的影响 </b></p>
<p>
<table cellspacing="0" cellpadding="0" width="100%">
<tbody>
<tr>
<td>
<div>
<p>&nbsp;</p></div></td></tr></tbody></table>由表2可看出:利用“营养土”覆盖的方式进行菌丝培养效果明显优于裸蛹发菌。在试验中,“营养土”的含水量在60%~65%左右,可以为菌丝萌发提供良好的环境条件,通过“营养土”覆盖发菌,菌丝生长速度快仅需4天即可显露,蛹体僵化时间短,10天即可完成,僵蛹率可达96%。但由于发菌环境湿度较大污染率稍高于常规发菌。</p>
<p align="center"><b>表2 </b><b>不同发菌培养方式对蛹体僵化的影响</b></p>
<table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0" width="552">
<tbody>
<tr>
<td width="84">
<p align="center"><b>培养方法</b></p></td>
<td width="96">
<p align="center"><b>试验蛹/个</b></p></td>
<td width="108">
<p align="center"><b>菌丝显露/天</b></p></td>
<td width="84">
<p align="center"><b>僵化/天</b></p></td>
<td width="96">
<p align="center"><b>污染数/个</b></p></td>
<td width="84">
<p align="center"><b>僵蛹数/个</b></p></td></tr>
<tr>
<td width="84">
<p align="center"><b>B<sub>1</sub></b></p>
<p align="center"><b>B<sub>2</sub></b></p></td>
<td width="96">
<p align="center">100</p>
<p align="center">100</p></td>
<td width="108">
<p align="center">4</p>
<p align="center">7</p></td>
<td width="84">
<p align="center">10</p>
<p align="center">14</p></td>
<td width="96">
<p align="center">2</p>
<p align="center">0</p></td>
<td width="84">
<p align="center">96</p>
<p align="center">85</p></td></tr></tbody></table>
<p><b>2.3 </b><b>不同处理方式对子座的影响</b> </p>
<p>由表3可知:在常规方式下发菌和出草单蛹平均着草13根,栽培时长约50天,由于着生的子 座较多,所以整齐度较差。利用覆土方式发菌常规出草,效果无明显变化,但着草率有所提高。而通过蛹体刻伤的方法进行子座生产,平均每头蛹仅着生4根子座(如图3,4),蛹体刻伤后更有利于子座的产生,着草率最高可达96%,生育期仅需40天。覆土与裸蛹两种不同发菌处理后的子座产生与C<sub>1</sub>情况又有不同,数据表明,发菌和出草都在”营养土”辅助的情况下进行效果最为理
<table cellspacing="0" cellpadding="0" width="100%">
<tbody>
<tr>
<td>
<div v:shape="_x0000_s1026">
<p>图4 子座40天生长状</p></div></td></tr></tbody></table>想。刻伤处理时增加了蛹体在空气中暴露的时间,创伤面容易污染,但是处理得当可以降低污染机率。</p>
<p align="center"><b>表3 不同处理方式对子座的影响</b></p>
<table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0">
<tbody>
<tr>
<td width="91">
<p align="center"><b>处理方式</b></p></td>
<td width="96">
<p align="center"><b>平均单蛹着草数/根</b><b></b></p></td>
<td width="108">
<p align="center"><b>着草率/%</b></p></td>
<td width="84">
<p align="center"><b>污染率/%</b></p></td>
<td width="96">
<p align="center"><b>生育期/天</b></p></td>
<td width="84">
<p align="center"><b>整齐度</b></p></td></tr>
<tr>
<td width="91">
<p align="center"><b>C<sub>1</sub></b></p>
<p align="center"><b>C<sub>3</sub></b></p>
<p align="center"><b>C<sub>2</sub></b></p>
<p align="center"><b>C<sub>4</sub></b></p></td>
<td width="96">
<p align="center">13</p>
<p align="center">16</p>
<p align="center">4</p>
<p align="center">5</p></td>
<td width="108">
<p align="center">79</p>
<p align="center">87</p>
<p align="center">94</p>
<p align="center">96</p></td>
<td width="84">
<p align="center">0</p>
<p align="center">2</p>
<p align="center">3</p>
<p align="center">3</p></td>
<td width="96">
<p align="center">50</p>
<p align="center">50</p>
<p align="center">40</p>
<p align="center">40</p></td>
<td width="84">
<p align="center">一般</p>
<p align="center">一般</p>
<p align="center">整齐</p>
<p align="center">整齐</p></td></tr></tbody></table>
<p>采收后,对不同处理方式下的子座高度进行测量和分析,由表4可看出:不同处理方式的子座高度F=292.75&gt;F<sub>0.01</sub>=5.95效果极显著,说明不同的处理方式对子座的影响不同。为进一步表明处理间存在的真实差异即差异显著性,再进行均数多重比较。由表5可知:C<sub>1</sub>、C<sub>2</sub>、C<sub>3</sub>、C<sub>4</sub>各处理之间差异显著性均达到α=0.05水平。C<sub>4 </sub>与C<sub>3</sub>、C<sub>1</sub> ,C<sub>2</sub>与C<sub>1</sub>、C<sub>3</sub>呈极显著差异,C<sub>4</sub>与C<sub>2</sub>之间无显著性差异。</p>
<p align="center"><b>表4 不同处理方法下子座高度的方差分析表</b></p>
<table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0" width="563">
<tbody>
<tr>
<td width="144">
<p align="center"><b>变异来源</b></p></td>
<td width="72">
<p><b>&nbsp;&nbsp; DF</b></p></td>
<td width="72">
<p align="center"><b>SS</b></p></td>
<td width="60">
<p align="center"><b>MS</b></p></td>
<td width="72">
<p align="center"><b>F</b></p></td>
<td width="143">
<p align="center"><b>显著F值</b></p></td></tr>
<tr>
<td width="144">
<p align="center"><b>处理方法间</b></p>
<p align="center"><b>处理方法内(误差)</b></p></td>
<td width="72">
<p align="center">3</p>
<p align="center">12</p></td>
<td width="72">
<p align="center">35.13</p>
<p align="center">0.45</p></td>
<td width="60">
<p align="center">11.71</p>
<p align="center">0.04</p></td>
<td width="72">
<p align="center">292.75**</p>
<p align="center">&nbsp;</p></td>
<td width="143">
<p align="center">F<sub>0.05</sub><sub>(3,12)</sub>=3.49</p>
<p align="center">F<sub>0.01</sub><sub>(3,12)</sub>=5.95</p></td></tr>
<tr>
<td width="144">
<p align="center"><b>总</b></p></td>
<td width="72">
<p align="center">15</p></td>
<td width="72">
<p align="center">35.58</p></td>
<td width="60">
<p align="center">&nbsp;</p></td>
<td width="72">
<p align="center">&nbsp;</p></td>
<td width="143">
<p align="center">&nbsp;</p></td></tr></tbody></table><b>
<p align="center"><b>表5 不同处理方法下子座高度的SSR检验</b></p>
<p align="center">&nbsp;</b></p>
<table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0" width="563">
<tbody>
<tr>
<td rowspan="2" width="144">
<p align="center"><b>处理</b></p></td>
<td rowspan="2" width="120">
<p align="center"><b>子座平均高度(cm)</b></p></td>
<td rowspan="2" width="24">
<p align="center"><b>&nbsp;</b></p></td>
<td rowspan="2" width="60">
<p align="center"><b>&nbsp;</b></p></td>
<td width="215" colspan="2">
<p align="center"><b>差异显著性</b></p></td></tr>
<tr>
<td width="72">
<p align="center"><b>0.05</b></p></td>
<td width="143">
<p align="center"><b>0.01</b></p></td></tr>
<tr>
<td width="144">
<p align="center"><b>C<sub>4</sub></b></p>
<p align="center"><b>C<sub>2</sub></b></p>
<p align="center"><b>C<sub>3</sub></b></p>
<p align="center"><b>C<sub>1</sub></b></p></td>
<td width="120">
<p align="center">7.08</p>
<p align="center">6.75</p>
<p align="center">4.20</p>
<p align="center">3.75</p></td>
<td width="24">
<p align="center">&nbsp;</p></td>
<td width="60">
<p align="center">&nbsp;</p></td>
<td width="72">
<p align="center">a</p>
<p align="center">b</p>
<p align="center">c</p>
<p align="center">d</p></td>
<td width="143">
<p align="center">A</p>
<p align="center">A</p>
<p align="center">B</p>
<p align="center">C</p></td></tr></tbody></table>
<p><b>3 </b><b>结论</b></p>
<p align="left">通过结果分析得知,接种方法可影响到僵蛹的数量和质量,试验数据表明将菌液直接注射到蛹体内,菌丝可迅速利用蛹体内的营养而恢复生长,僵化速度快、长势强、质量好。喷菌接种由于液体菌种营养丰富,为杂菌的生长提供了有利条件,也为前期的蛹体消毒增加的负担。所以,综合僵蛹时间、僵蛹质量、污染率等方面的考虑,以蛹体注射接种较为理想;在发菌培养时,以“营养土”覆盖可限制蛹体内的水分提早蒸散,能够为菌丝快速生长提供恒定湿度在65%RH的有利的环境条件,使得菌丝生长迅速、健壮,缩短了僵蛹时间也为后期子座的生长提供了水分保障。以“营养土”覆盖发菌配以刻伤蛹体的生产方式生产蛹虫草出草率可以达到96%以上,每只蛹体只着生4~5个子座,既保证了产量,又提高了产品的外观品质。应用刻伤的方法后生育期只需40天,较常规生产缩减了10天。生产中虽然增加了技术环节,但污染率很低,几乎与常规方法持平。所以,采用覆盖发菌配以刻伤的方法生产蛹虫草达到了高产、优质、缩短生长周期的目的。</p>
<p align="left">在蛹虫草生产过程中,受到蚕蛹质量、菌种质量、培养时期温度、湿度、生产者的技术水平和设备条件等诸多种因素的影响,作者认为本试验方法、结果在实际生产中有可取之处,遂整理成文,仅供大家参考之用。</p>
<p align="left"><b>&nbsp;</b></p>
<p align="left"><b>&nbsp;</b></p>
<p align="left"><b>参考文献</b></p>
<p align="left"> 李亚洁,孟 楠,石理鑫等.蛹虫草高产栽培技术研究. 食用菌,2009(1):34-35</p>
<p align="left"> 郑庆委,王媛媛,高淑娴等.蛹虫草菌感染五龄桑蚕的研究.食用菌,2008(5):32-35</p>
<p align="left"> 孟楠,李亚杰,李学军等.人工培育柞蚕虫草的研究.辽宁农业科学,2009(2):63-64</p>
<p> 代君君,范涛,吴传华等.人工栽培蛹虫草研究的概述.安徽农业科学,2007,35(18):5469-5471</p>
<p> 肖建京.利用桑蚕蛹栽培北虫草关键技术研究蚕学通报,2006(1):10-24</p>
<p> 刘晓红.人工混合料栽培北虫草技术.食用菌,2009(4):58-59</p>
<p> 马文石,李凤芹,金英.柞蚕蛹虫草栽培技术.食用菌,2008(4):45-46</p>

黄大 发表于 2011-4-16 12:29:31

<p>高处不胜寒啊,我只能顶了</p>

zc342402168 发表于 2011-4-24 21:16:16

<p>厉害哦,都把论文搬到论坛上来了,顶你!</p>

ecosway999 发表于 2011-9-13 10:50:45

三到四根,可以出草吗?将你的图片发上来就更有说服力,目前这个培育方式是个盲区,菌种也很混乱。

yuanbin07031 发表于 2011-12-12 16:52:44

顶一个,<br/><br/>建议以图片为证啊

北虫草种植 发表于 2012-2-19 19:07:58

<p><font face="Verdana">本公司种植虫草已经有五个年头,积累了丰富的种植经验,我公司虫草,草长,成色好,产量高,头大,受到众多厂家的抢购,欢迎朋友们来厂参观定购!电话:0317-5561432&nbsp;&nbsp;&nbsp; 13833717881</font></p>

xrf66 发表于 2013-5-3 11:26:34

我的电脑为什么没法浏览这帖子

不大不小菇 发表于 2013-5-3 11:32:11

自己的东西应该有电子稿啊,怎么弄成这样,看的很难受。发过好一点的来或者干脆扫描图片吧。

honggu888 发表于 2013-5-4 18:46:44

{:soso_e196:}
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